Microbiologia

Algumas doenças veiculadas pela água e seus agentes
Doenças Agentes patogênicos Fonte: Opas, 1999
Material utilizado em bacteriologia
a) autoclave;
b) estufa bacteriológica;
c) estufa de esterilização e secagem;
d) balança;
e) destilador;
f) banho-maria;
g) contador de colônias;
h) alça de platina com cabo;
Manual Prático de Análise de Água 11
i) tubo de Durhan;
j) tubo de ensaio;
k) algodão em rama;
l) meios de cultura;
m) frascos de coleta;
n) pipetas graduadas;
o) pipetador;
p) papel-alumínio;
q) lamparina a álcool ou bico de Bunsen;
r) placas de Petri;
s) pinça de aço inox;
t) membranas filtrantes;
u) porta-filtro de vidro ou aço inox;
v) lâmpada ultravioleta

Preparo do material de vidro

Tubos de ensaio

a) colocar o tubo de Durhan na posição invertida dentro do tubo de ensaio;
b) tampar o tubo de ensaio com um chumaço de algodão em rama.

Frascos de coleta

a) colocar duas gotas (0,1 ml) de Tiossulfato de Sódio a 10% dentro do frasco;

b) colocar uma tira de papel-alumínio entre a boca e a tampa do frasco;

c) envolver a boca e tampa do frasco em papel-alumínio.

Pipetas

a) colocar um pequeno chumaço de algodão no bocal da pipeta; b) envolvê-la em papel-alumínio ou papel-madeira.

Placas de petri de vidro

a) envolvê-las em papel-alumínio ou papel-madeira.
Nota: Frascos de coleta, pipetas e placas de Petri devem ser esterilizados e antes de serem preparados devem estar limpos e secos (ver esterilização pg. 32).

Meios de cultura

a) caldo lactosado;
b) caldo lactosado verde brilhante Bile a 2%;
c) caldo EC;
d)Plate Count Agar

Preparação dos meios de cultura
Caldo lactosado de concentração dupla

a) pesar 26 gramas do meio de cultura e dissolver em 1.000 ml de água destilada;

b) distribuir em tubos de ensaio (10 ml em cada tubo), tampar os tubos;

c) esterilizar a 121º C (1 Kg/cm2 de pressão) em autoclave durante 15 minutos;

d) deixar esfriar;

e) guardar no